分光光度法检测半导体工业用水中痕量硅
硅酸盐在酸性介质中与钼酸铵反应生成硅钼黄，硅钼黄还原为硅钼蓝后，可被hlb小柱定量萃取。在此基础上，建立了流动注射固相萃取分光光度（fispevis）测定水中痕量硅酸盐的新方法。反应生成的硅钼蓝经hlb小柱萃取后，用水清洗去除杂质，naoh溶液洗脱，分光光度法检测。实验对各参数进行了优化，优化后的参数为：洗脱剂浓度0.01mol/l;试样上柱流速28.0ml/min;洗脱流速3.5ml/min;反应温度45℃;硅钼黄与硅钼蓝反应时间均为5min;钼酸铵混合溶液、草酸溶液、抗坏血酸溶液的用量分别为3.5，3.5和1.75ml。本方法具有良好的重现性和灵敏度，测定含硅9.33μg/l的硅酸盐水样7次，rsd值为1.8%;选取不同的试样富集时间，可将定量分析的线性范围扩展为0.47～117μg/l;检出限0.18μg/l;回收率为96.8%～105%。可满足特殊工业用水中痕量硅检测的需要。
【关键词】流动注射分析，固相萃取，痕量硅，硅钼蓝
1引言
工业用水中的硅含量若超出允许范围，将对产品产生不良影响，甚至造成严重事故。例如，可溶性硅浓度是火力发电厂、试剂厂、半导体厂等用水质量的重要控制指标之一。半导体工业用水的硅浓度限制在1μg/l以下[1]。水中的可溶性硅主要以硅酸形式存在，经典的测定方法为硅钼蓝分光光度法。该法检出限较高，不能满足工业用水中硅的检测要求。近年来新的检测方法相继出现，包括改进的硅钼蓝法[2,3]、碱性染料分光法[1,4]、动力学光度法[5,6]、鲁米诺化学发光法[7,8]、荧光法[9,10]、电化学法[11]以及原子光谱法[12,13]等。这些方法，或灵敏度达不到要求，或干扰严重，实验操作要求高，均未得到广泛应用。
本研究以流动注射分析（fi）技术控制分析过程，将硅钼蓝富集在hlbtm固相萃取（spe）小柱上，以少量naoh溶液洗脱，由可见分光光度计在线检测，由此建立了流动注射固相萃取分光光度（fispevis）测定水中痕量硅酸盐的新方法。
2实验部分
2.1仪器和试剂
732pc型可见分光光度计（上海光谱仪器有限公司）;fia3110型流动注射分析处理仪（北京吉天仪器有限公司）;hh1型数显恒温水浴锅（金坛市顺华仪器有限公司）;oasishlb小柱（美国waters公司）。实验器皿用hcl（1∶4,v/v）浸泡10min后，用纯水清洗。蠕动泵管为硅橡胶管，流路管道为ptfe管，实验器皿均为非玻璃材质器皿。试剂均由miliq纯水机（美国millipore公司）制备的纯水（18.2mω·cm）配制。硅标准溶液（100mg/l（以sio2计），国家标准物质研究中心）;1.5mol/lh2so4（优级纯，广东汕头化学试剂厂）;钼酸铵（分析纯，国药集团）混合溶液：称取2.1g（nh4）6m7o24·7h2o溶于50ml水中，将此溶液缓慢地加入到50mlh2so4中;100g/l草酸（分析纯，广东汕头市西陇化工厂）溶液;28g/l抗坏血酸（分析纯，国药集团）溶液。0.6mol/lnaoh（优级纯，上海山海工学团实验二厂）贮备液;0.01mol/lnaoh使用液;无水乙醇（分析纯，国药集团）。
1.钼酸铵混合溶液（ammoniummolybdate）;2.草酸溶液（oxalicacid）;3.抗坏血酸溶液（ascorbicacid）;4,6,8.h2o;5.无水乙醇（ethnaol）;7.naoh;v1.八位阀（8positionvalve）;v2.八通阀（8portrotoryvalve）;p1，p2.蠕动泵（pump）;rc.反应瓶（reactioncontainer）;d.检测器（detector）;w.废液（waste）。实线阀位（valvepositioninrealline）：inject;虚线阀位（valvepositionindashedline）：fill。2.2实验方法与流动注射分析流路图
流动注射分析的流路见图1。流动注射分析程序列于表1。量取100ml试样于聚乙烯瓶中，运行步骤：（1）p1泵将3.5ml钼酸铵混合溶液送入反应瓶rc中;（2）瓶中的硅酸与钼酸铵反应生成硅钼黄;（3）反应5min后，3.5ml草酸溶液与1.75ml抗坏血酸溶液被p1泵先后泵入反应瓶中;（4）所有试剂加毕，试液在45℃水浴中反应5min;（5）乙醇与水依次被p1泵过hlb小柱，清洗小柱并预冲洗管道;（6）启动p2，试液以28.0ml/min的流速通过hlb小柱，其中的硅钼蓝被萃取;（7）水清洗小柱;（8）吸附在hlb小柱上的硅钼蓝被0.01mol/lnaoh溶液以3.5ml/min的流速洗脱，流经2mm（i.d.）×2cm的流通池，由分光光度计于810nm处测定吸光值。该信号被计算机连续采集，每0.5s记录1个数据，以洗脱曲线的形式输出。洗脱曲线峰高处的吸光值，即试样中活性硅定量的依据。为防止小柱长期浸泡于碱性洗脱剂，洗脱完毕需用水反向清洗小柱。表1流动注射分析程序及阀位
3结果与讨论
3.1检测波长的选择
取适量水样加试剂反应后，过hlb柱，萃取硅钼蓝并用naoh溶液洗脱，采用732pc型分光光度计，以洗脱剂为参比，绘制硅钼蓝洗脱液的吸收光谱（见图2）。实验选择810nm为检测波长。
3.2洗脱剂的选择
吸附在小柱上的硅钼蓝可被naoh溶液洗脱。恒定其它参数（如2.3所述），考察了不同浓度naoh的洗脱效果。结果表明:在0.01～0.05mol/l范围内，naoh浓度大小对洗脱液的信号基本没影响。洗脱剂与残留在柱上的试样之间的界面折射率差异对检测信号产生干扰。考察了不同naoh浓度下的schlieren效应。本实验选用清水清洗富集硅钼蓝后的小柱，再由naoh溶液洗脱;在所选择的naoh浓度范围内，schlieren效应较小，对实验测定无影响。实验选择0.01mol/lnaoh作洗脱剂。
3.3试样过柱流速及洗脱流速的选择
固相萃取时，流速快则溶液中的目标物被吸附不够*，且柱压较大;流速慢则耗时多。在12～28ml/min之间变化流速，考察了试样上柱流速对萃取效果的影响。在所选择的流速范围内，萃取效果几乎不受影响。综合考虑萃取效果、分析时间及柱压等因素，试样过柱流速选择28ml/min。
在3.5～9.5ml/min之间变化流速，考察了洗脱流速对吸光信号的影响。吸光值随洗脱流速增大略有减少。综合洗脱效果、重现性等因素，选择洗脱流速为3.5ml/min。
3.4反应温度和时间的选择
在25～65℃之间考察了反应温度对试样吸光值的影响（见图3）。选择45℃作为实验反应温度。
水中硅酸盐与钼酸铵发生反应生成硅钼黄，硅钼黄再被还原为硅钼蓝。这两个反应的时间对信号有一定影响。考察反应所需时间与吸光值的关系，结果分别如图4a和图4b所示。2个反应的时间均选择5min。
3.5钼酸铵混合溶液用量和抗坏血酸溶液用量的选择
控制适当的溶液ph值，是保证比色分析获得良好结果的重要条件之一[14]。参照文献[15],本研究固定[h ]与[moo2-4]比例为0.15%～0.20%，研究了钼酸铵混合溶液用量对硅钼蓝形成的影响。钼酸铵混合溶液加入量为2.0ml，9.33μg/lsi的吸光度约为0.32;钼酸铵混合溶液加入量>3.5ml后，吸光度达到0.48,趋于饱和。实验选择在100ml试样中加入3.5ml钼酸铵混合溶液。
对抗坏血酸溶液的用量进行了优化。抗坏血酸溶液的用量>1.75ml时，吸光值几乎不变，过量的抗坏血酸无影响。实验选择在100ml试样中加入1.75ml28g/l抗坏血酸溶液。
【摘要】硅酸盐在酸性介质中与钼酸铵反应生成硅钼黄，硅钼黄还原为硅钼蓝后，可被hlb小柱定量萃取。在此基础上，建立了流动注射固相萃取分光光度（fispevis）测定水中痕量硅酸盐的新方法。反应生成的硅钼蓝经hlb小柱萃取后，用水清洗去除杂质，naoh溶液洗脱，分光光度法检测。实验对各参数进行了优化，优化后的参数为：洗脱剂浓度0.01mol/l;试样上柱流速28.0ml/min;洗脱流速3.5ml/min;反应温度45℃;硅钼黄与硅钼蓝反应时间均为5min;钼酸铵混合溶液、草酸溶液、抗坏血酸溶液的用量分别为3.5，3.5和1.75ml。本方法具有良好的重现性和灵敏度，测定含硅9.33μg/l的硅酸盐水样7次，rsd值为1.8%;选取不同的试样富集时间，可将定量分析的线性范围扩展为0.47～117μg/l;检出限0.18μg/l;回收率为96.8%～105%。可满足特殊工业用水中痕量硅检测的需要。
【关键词】流动注射分析，固相萃取，痕量硅，硅钼蓝
1引言
工业用水中的硅含量若超出允许范围，将对产品产生不良影响，甚至造成严重事故。例如，可溶性硅浓度是火力发电厂、试剂厂、半导体厂等用水质量的重要控制指标之一。半导体工业用水的硅浓度限制在1μg/l以下[1]。水中的可溶性硅主要以硅酸形式存在，经典的测定方法为硅钼蓝分光光度法。该法检出限较高，不能满足工业用水中硅的检测要求。近年来新的检测方法相继出现，包括改进的硅钼蓝法[2,3]、碱性染料分光法[1,4]、动力学光度法[5,6]、鲁米诺化学发光法[7,8]、荧光法[9,10]、电化学法[11]以及原子光谱法[12,13]等。这些方法，或灵敏度达不到要求，或干扰严重，实验操作要求高，均未得到广泛应用。
本研究以流动注射分析（fi）技术控制分析过程，将硅钼蓝富集在hlbtm固相萃取（spe）小柱上，以少量naoh溶液洗脱，由可见分光光度计在线检测，由此建立了流动注射固相萃取分光光度（fispevis）测定水中痕量硅酸盐的新方法。
2实验部分
2.1仪器和试剂
732pc型可见分光光度计（上海光谱仪器有限公司）;fia3110型流动注射分析处理仪（北京吉天仪器有限公司）;hh1型数显恒温水浴锅（金坛市顺华仪器有限公司）;oasishlb小柱（美国waters公司）。实验器皿用hcl（1∶4,v/v）浸泡10min后，用纯水清洗。蠕动泵管为硅橡胶管，流路管道为ptfe管，实验器皿均为非玻璃材质器皿。试剂均由miliq纯水机（美国millipore公司）制备的纯水（18.2mω·cm）配制。硅标准溶液（100mg/l（以sio2计），国家标准物质研究中心）;1.5mol/lh2so4（优级纯，广东汕头化学试剂厂）;钼酸铵（分析纯，国药集团）混合溶液：称取2.1g（nh4）6m7o24·7h2o溶于50ml水中，将此溶液缓慢地加入到50mlh2so4中;100g/l草酸（分析纯，广东汕头市西陇化工厂）溶液;28g/l抗坏血酸（分析纯，国药集团）溶液。0.6mol/lnaoh（优级纯，上海山海工学团实验二厂）贮备液;0.01mol/lnaoh使用液;无水乙醇（分析纯，国药集团）。
1.钼酸铵混合溶液（ammoniummolybdate）;2.草酸溶液（oxalicacid）;3.抗坏血酸溶液（ascorbicacid）;4,6,8.h2o;5.无水乙醇（ethnaol）;7.naoh;v1.八位阀（8positionvalve）;v2.八通阀（8portrotoryvalve）;p1，p2.蠕动泵（pump）;rc.反应瓶（reactioncontainer）;d.检测器（detector）;w.废液（waste）。实线阀位（valvepositioninrealline）：inject;虚线阀位（valvepositionindashedline）：fill。2.2实验方法与流动注射分析流路图
流动注射分析的流路见图1。流动注射分析程序列于表1。量取100ml试样于聚乙烯瓶中，运行步骤：（1）p1泵将3.5ml钼酸铵混合溶液送入反应瓶rc中;（2）瓶中的硅酸与钼酸铵反应生成硅钼黄;（3）反应5min后，3.5ml草酸溶液与1.75ml抗坏血酸溶液被p1泵先后泵入反应瓶中;（4）所有试剂加毕，试液在45℃水浴中反应5min;（5）乙醇与水依次被p1泵过hlb小柱，清洗小柱并预冲洗管道;（6）启动p2，试液以28.0ml/min的流速通过hlb小柱，其中的硅钼蓝被萃取;（7）水清洗小柱;（8）吸附在hlb小柱上的硅钼蓝被0.01mol/lnaoh溶液以3.5ml/min的流速洗脱，流经2mm（i.d.）×2cm的流通池，由分光光度计于810nm处测定吸光值。该信号被计算机连续采集，每0.5s记录1个数据，以洗脱曲线的形式输出。洗脱曲线峰高处的吸光值，即试样中活性硅定量的依据。为防止小柱长期浸泡于碱性洗脱剂，洗脱完毕需用水反向清洗小柱。表1流动注射分析程序及阀位
3结果与讨论
3.1检测波长的选择
取适量水样加试剂反应后，过hlb柱，萃取硅钼蓝并用naoh溶液洗脱，采用732pc型分光光度计，以洗脱剂为参比，绘制硅钼蓝洗脱液的吸收光谱（见图2）。实验选择810nm为检测波长。
3.2洗脱剂的选择
吸附在小柱上的硅钼蓝可被naoh溶液洗脱。恒定其它参数（如2.3所述），考察了不同浓度naoh的洗脱效果。结果表明:在0.01～0.05mol/l范围内，naoh浓度大小对洗脱液的信号基本没影响。洗脱剂与残留在柱上的试样之间的界面折射率差异对检测信号产生干扰。考察了不同naoh浓度下的schlieren效应。本实验选用清水清洗富集硅钼蓝后的小柱，再由naoh溶液洗脱;在所选择的naoh浓度范围内，schlieren效应较小，对实验测定无影响。实验选择0.01mol/lnaoh作洗脱剂。
3.3试样过柱流速及洗脱流速的选择
固相萃取时，流速快则溶液中的目标物被吸附不够*，且柱压较大;流速慢则耗时多。在12～28ml/min之间变化流速，考察了试样上柱流速对萃取效果的影响。在所选择的流速范围内，萃取效果几乎不受影响。综合考虑萃取效果、分析时间及柱压等因素，试样过柱流速选择28ml/min。
在3.5～9.5ml/min之间变化流速，考察了洗脱流速对吸光信号的影响。吸光值随洗脱流速增大略有减少。综合洗脱效果、重现性等因素，选择洗脱流速为3.5ml/min。
3.4反应温度和时间的选择
在25～65℃之间考察了反应温度对试样吸光值的影响（见图3）。选择45℃作为实验反应温度。
水中硅酸盐与钼酸铵发生反应生成硅钼黄，硅钼黄再被还原为硅钼蓝。这两个反应的时间对信号有一定影响。考察反应所需时间与吸光值的关系，结果分别如图4a和图4b所示。2个反应的时间均选择5min。
3.5钼酸铵混合溶液用量和抗坏血酸溶液用量的选择
控制适当的溶液ph值，是保证比色分析获得良好结果的重要条件之一[14]。参照文献[15],本研究固定[h ]与[moo2-4]比例为0.15%～0.20%，研究了钼酸铵混合溶液用量对硅钼蓝形成的影响。钼酸铵混合溶液加入量为2.0ml，9.33μg/lsi的吸光度约为0.32;钼酸铵混合溶液加入量>3.5ml后，吸光度达到0.48,趋于饱和。实验选择在100ml试样中加入3.5ml钼酸铵混合溶液。
对抗坏血酸溶液的用量进行了优化。抗坏血酸溶液的用量>1.75ml时，吸光值几乎不变，过量的抗坏血酸无影响。实验选择在100ml试样中加入1.75ml28g/l抗坏血酸溶液。
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【关键词】流动注射分析，固相萃取，痕量硅，硅钼蓝
1引言
工业用水中的硅含量若超出允许范围，将对产品产生不良影响，甚至造成严重事故。例如，可溶性硅浓度是火力发电厂、试剂厂、半导体厂等用水质量的重要控制指标之一。半导体工业用水的硅浓度限制在1μg/l以下[1]。水中的可溶性硅主要以硅酸形式存在，经典的测定方法为硅钼蓝分光光度法。该法检出限较高，不能满足工业用水中硅的检测要求。近年来新的检测方法相继出现，包括改进的硅钼蓝法[2,3]、碱性染料分光法[1,4]、动力学光度法[5,6]、鲁米诺化学发光法[7,8]、荧光法[9,10]、电化学法[11]以及原子光谱法[12,13]等。这些方法，或灵敏度达不到要求，或干扰严重，实验操作要求高，均未得到广泛应用。
本研究以流动注射分析（fi）技术控制分析过程，将硅钼蓝富集在hlbtm固相萃取（spe）小柱上，以少量naoh溶液洗脱，由可见分光光度计在线检测，由此建立了流动注射固相萃取分光光度（fispevis）测定水中痕量硅酸盐的新方法。
2实验部分
2.1仪器和试剂
732pc型可见分光光度计（上海光谱仪器有限公司）;fia3110型流动注射分析处理仪（北京吉天仪器有限公司）;hh1型数显恒温水浴锅（金坛市顺华仪器有限公司）;oasishlb小柱（美国waters公司）。实验器皿用hcl（1∶4,v/v）浸泡10min后，用纯水清洗。蠕动泵管为硅橡胶管，流路管道为ptfe管，实验器皿均为非玻璃材质器皿。试剂均由miliq纯水机（美国millipore公司）制备的纯水（18.2mω·cm）配制。硅标准溶液（100mg/l（以sio2计），国家标准物质研究中心）;1.5mol/lh2so4（优级纯，广东汕头化学试剂厂）;钼酸铵（分析纯，国药集团）混合溶液：称取2.1g（nh4）6m7o24·7h2o溶于50ml水中，将此溶液缓慢地加入到50mlh2so4中;100g/l草酸（分析纯，广东汕头市西陇化工厂）溶液;28g/l抗坏血酸（分析纯，国药集团）溶液。0.6mol/lnaoh（优级纯，上海山海工学团实验二厂）贮备液;0.01mol/lnaoh使用液;无水乙醇（分析纯，国药集团）。
1.钼酸铵混合溶液（ammoniummolybdate）;2.草酸溶液（oxalicacid）;3.抗坏血酸溶液（ascorbicacid）;4,6,8.h2o;5.无水乙醇（ethnaol）;7.naoh;v1.八位阀（8positionvalve）;v2.八通阀（8portrotoryvalve）;p1，p2.蠕动泵（pump）;rc.反应瓶（reactioncontainer）;d.检测器（detector）;w.废液（waste）。实线阀位（valvepositioninrealline）：inject;虚线阀位（valvepositionindashedline）：fill。2.2实验方法与流动注射分析流路图
流动注射分析的流路见图1。流动注射分析程序列于表1。量取100ml试样于聚乙烯瓶中，运行步骤：（1）p1泵将3.5ml钼酸铵混合溶液送入反应瓶rc中;（2）瓶中的硅酸与钼酸铵反应生成硅钼黄;（3）反应5min后，3.5ml草酸溶液与1.75ml抗坏血酸溶液被p1泵先后泵入反应瓶中;（4）所有试剂加毕，试液在45℃水浴中反应5min;（5）乙醇与水依次被p1泵过hlb小柱，清洗小柱并预冲洗管道;（6）启动p2，试液以28.0ml/min的流速通过hlb小柱，其中的硅钼蓝被萃取;（7）水清洗小柱;（8）吸附在hlb小柱上的硅钼蓝被0.01mol/lnaoh溶液以3.5ml/min的流速洗脱，流经2mm（i.d.）×2cm的流通池，由分光光度计于810nm处测定吸光值。该信号被计算机连续采集，每0.5s记录1个数据，以洗脱曲线的形式输出。洗脱曲线峰高处的吸光值，即试样中活性硅定量的依据。为防止小柱长期浸泡于碱性洗脱剂，洗脱完毕需用水反向清洗小柱。表1流动注射分析程序及阀位
3结果与讨论
3.1检测波长的选择
取适量水样加试剂反应后，过hlb柱，萃取硅钼蓝并用naoh溶液洗脱，采用732pc型分光光度计，以洗脱剂为参比，绘制硅钼蓝洗脱液的吸收光谱（见图2）。实验选择810nm为检测波长。
3.2洗脱剂的选择
吸附在小柱上的硅钼蓝可被naoh溶液洗脱。恒定其它参数（如2.3所述），考察了不同浓度naoh的洗脱效果。结果表明:在0.01～0.05mol/l范围内，naoh浓度大小对洗脱液的信号基本没影响。洗脱剂与残留在柱上的试样之间的界面折射率差异对检测信号产生干扰。考察了不同naoh浓度下的schlieren效应。本实验选用清水清洗富集硅钼蓝后的小柱，再由naoh溶液洗脱;在所选择的naoh浓度范围内，schlieren效应较小，对实验测定无影响。实验选择0.01mol/lnaoh作洗脱剂。
3.3试样过柱流速及洗脱流速的选择
固相萃取时，流速快则溶液中的目标物被吸附不够*，且柱压较大;流速慢则耗时多。在12～28ml/min之间变化流速，考察了试样上柱流速对萃取效果的影响。在所选择的流速范围内，萃取效果几乎不受影响。综合考虑萃取效果、分析时间及柱压等因素，试样过柱流速选择28ml/min。
在3.5～9.5ml/min之间变化流速，考察了洗脱流速对吸光信号的影响。吸光值随洗脱流速增大略有减少。综合洗脱效果、重现性等因素，选择洗脱流速为3.5ml/min。
3.4反应温度和时间的选择
在25～65℃之间考察了反应温度对试样吸光值的影响（见图3）。选择45℃作为实验反应温度。
水中硅酸盐与钼酸铵发生反应生成硅钼黄，硅钼黄再被还原为硅钼蓝。这两个反应的时间对信号有一定影响。考察反应所需时间与吸光值的关系，结果分别如图4a和图4b所示。2个反应的时间均选择5min。
3.5钼酸铵混合溶液用量和抗坏血酸溶液用量的选择
控制适当的溶液ph值，是保证比色分析获得良好结果的重要条件之一[14]。参照文献[15],本研究固定[h ]与[moo2-4]比例为0.15%～0.20%，研究了钼酸铵混合溶液用量对硅钼蓝形成的影响。钼酸铵混合溶液加入量为2.0ml，9.33μg/lsi的吸光度约为0.32;钼酸铵混合溶液加入量>3.5ml后，吸光度达到0.48,趋于饱和。实验选择在100ml试样中加入3.5ml钼酸铵混合溶液。
对抗坏血酸溶液的用量进行了优化。抗坏血酸溶液的用量>1.75ml时，吸光值几乎不变，过量的抗坏血酸无影响。实验选择在100ml试样中加入1.75ml28g/l抗坏血酸溶液。
【摘要】硅酸盐在酸性介质中与钼酸铵反应生成硅钼黄，硅钼黄还原为硅钼蓝后，可被hlb小柱定量萃取。在此基础上，建立了流动注射固相萃取分光光度（fispevis）测定水中痕量硅酸盐的新方法。反应生成的硅钼蓝经hlb小柱萃取后，用水清洗去除杂质，naoh溶液洗脱，分光光度法检测。实验对各参数进行了优化，优化后的参数为：洗脱剂浓度0.01mol/l;试样上柱流速28.0ml/min;洗脱流速3.5ml/min;反应温度45℃;硅钼黄与硅钼蓝反应时间均为5min;钼酸铵混合溶液、草酸溶液、抗坏血酸溶液的用量分别为3.5，3.5和1.75ml。本方法具有良好的重现性和灵敏度，测定含硅9.33μg/l的硅酸盐水样7次，rsd值为1.8%;选取不同的试样富集时间，可将定量分析的线性范围扩展为0.47～117μg/l;检出限0.18μg/l;回收率为96.8%～105%。可满足特殊工业用水中痕量硅检测的需要。
【关键词】流动注射分析，固相萃取，痕量硅，硅钼蓝
1引言
工业用水中的硅含量若超出允许范围，将对产品产生不良影响，甚至造成严重事故。例如，可溶性硅浓度是火力发电厂、试剂厂、半导体厂等用水质量的重要控制指标之一。半导体工业用水的硅浓度限制在1μg/l以下[1]。水中的可溶性硅主要以硅酸形式存在，经典的测定方法为硅钼蓝分光光度法。该法检出限较高，不能满足工业用水中硅的检测要求。近年来新的检测方法相继出现，包括改进的硅钼蓝法[2,3]、碱性染料分光法[1,4]、动力学光度法[5,6]、鲁米诺化学发光法[7,8]、荧光法[9,10]、电化学法[11]以及原子光谱法[12,13]等。这些方法，或灵敏度达不到要求，或干扰严重，实验操作要求高，均未得到广泛应用。
本研究以流动注射分析（fi）技术控制分析过程，将硅钼蓝富集在hlbtm固相萃取（spe）小柱上，以少量naoh溶液洗脱，由可见分光光度计在线检测，由此建立了流动注射固相萃取分光光度（fispevis）测定水中痕量硅酸盐的新方法。
2实验部分
2.1仪器和试剂
732pc型可见分光光度计（上海光谱仪器有限公司）;fia3110型流动注射分析处理仪（北京吉天仪器有限公司）;hh1型数显恒温水浴锅（金坛市顺华仪器有限公司）;oasishlb小柱（美国waters公司）。实验器皿用hcl（1∶4,v/v）浸泡10min后，用纯水清洗。蠕动泵管为硅橡胶管，流路管道为ptfe管，实验器皿均为非玻璃材质器皿。试剂均由miliq纯水机（美国millipore公司）制备的纯水（18.2mω·cm）配制。硅标准溶液（100mg/l（以sio2计），国家标准物质研究中心）;1.5mol/lh2so4（优级纯，广东汕头化学试剂厂）;钼酸铵（分析纯，国药集团）混合溶液：称取2.1g（nh4）6m7o24·7h2o溶于50ml水中，将此溶液缓慢地加入到50mlh2so4中;100g/l草酸（分析纯，广东汕头市西陇化工厂）溶液;28g/l抗坏血酸（分析纯，国药集团）溶液。0.6mol/lnaoh（优级纯，上海山海工学团实验二厂）贮备液;0.01mol/lnaoh使用液;无水乙醇（分析纯，国药集团）。
1.钼酸铵混合溶液（ammoniummolybdate）;2.草酸溶液（oxalicacid）;3.抗坏血酸溶液（ascorbicacid）;4,6,8.h2o;5.无水乙醇（ethnaol）;7.naoh;v1.八位阀（8positionvalve）;v2.八通阀（8portrotoryvalve）;p1，p2.蠕动泵（pump）;rc.反应瓶（reactioncontainer）;d.检测器（detector）;w.废液（waste）。实线阀位（valvepositioninrealline）：inject;虚线阀位（valvepositionindashedline）：fill。2.2实验方法与流动注射分析流路图
流动注射分析的流路见图1。流动注射分析程序列于表1。量取100ml试样于聚乙烯瓶中，运行步骤：（1）p1泵将3.5ml钼酸铵混合溶液送入反应瓶rc中;（2）瓶中的硅酸与钼酸铵反应生成硅钼黄;（3）反应5min后，3.5ml草酸溶液与1.75ml抗坏血酸溶液被p1泵先后泵入反应瓶中;（4）所有试剂加毕，试液在45℃水浴中反应5min;（5）乙醇与水依次被p1泵过hlb小柱，清洗小柱并预冲洗管道;（6）启动p2，试液以28.0ml/min的流速通过hlb小柱，其中的硅钼蓝被萃取;（7）水清洗小柱;（8）吸附在hlb小柱上的硅钼蓝被0.01mol/lnaoh溶液以3.5ml/min的流速洗脱，流经2mm（i.d.）×2cm的流通池，由分光光度计于810nm处测定吸光值。该信号被计算机连续采集，每0.5s记录1个数据，以洗脱曲线的形式输出。洗脱曲线峰高处的吸光值，即试样中活性硅定量的依据。为防止小柱长期浸泡于碱性洗脱剂，洗脱完毕需用水反向清洗小柱。表1流动注射分析程序及阀位
3结果与讨论
3.1检测波长的选择
取适量水样加试剂反应后，过hlb柱，萃取硅钼蓝并用naoh溶液洗脱，采用732pc型分光光度计，以洗脱剂为参比，绘制硅钼蓝洗脱液的吸收光谱（见图2）。实验选择810nm为检测波长。
3.2洗脱剂的选择
吸附在小柱上的硅钼蓝可被naoh溶液洗脱。恒定其它参数（如2.3所述），考察了不同浓度naoh的洗脱效果。结果表明:在0.01～0.05mol/l范围内，naoh浓度大小对洗脱液的信号基本没影响。洗脱剂与残留在柱上的试样之间的界面折射率差异对检测信号产生干扰。考察了不同naoh浓度下的schlieren效应。本实验选用清水清洗富集硅钼蓝后的小柱，再由naoh溶液洗脱;在所选择的naoh浓度范围内，schlieren效应较小，对实验测定无影响。实验选择0.01mol/lnaoh作洗脱剂。
3.3试样过柱流速及洗脱流速的选择
固相萃取时，流速快则溶液中的目标物被吸附不够*，且柱压较大;流速慢则耗时多。在12～28ml/min之间变化流速，考察了试样上柱流速对萃取效果的影响。在所选择的流速范围内，萃取效果几乎不受影响。综合考虑萃取效果、分析时间及柱压等因素，试样过柱流速选择28ml/min。
在3.5～9.5ml/min之间变化流速，考察了洗脱流速对吸光信号的影响。吸光值随洗脱流速增大略有减少。综合洗脱效果、重现性等因素，选择洗脱流速为3.5ml/min。
3.4反应温度和时间的选择
在25～65℃之间考察了反应温度对试样吸光值的影响（见图3）。选择45℃作为实验反应温度。
水中硅酸盐与钼酸铵发生反应生成硅钼黄，硅钼黄再被还原为硅钼蓝。这两个反应的时间对信号有一定影响。考察反应所需时间与吸光值的关系，结果分别如图4a和图4b所示。2个反应的时间均选择5min。
3.5钼酸铵混合溶液用量和抗坏血酸溶液用量的选择
控制适当的溶液ph值，是保证比色分析获得良好结果的重要条件之一[14]。参照文献[15],本研究固定[h ]与[moo2-4]比例为0.15%～0.20%，研究了钼酸铵混合溶液用量对硅钼蓝形成的影响。钼酸铵混合溶液加入量为2.0ml，9.33μg/lsi的吸光度约为0.32;钼酸铵混合溶液加入量>3.5ml后，吸光度达到0.48,趋于饱和。实验选择在100ml试样中加入3.5ml钼酸铵混合溶液。
对抗坏血酸溶液的用量进行了优化。抗坏血酸溶液的用量>1.75ml时，吸光值几乎不变，过量的抗坏血酸无影响。实验选择在100ml试样中加入1.75ml28g/l抗坏血酸溶液。
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