ayp-c100手持式藻类荧光测量仪(探头式)是一款用于快速、精确测量水体叶绿素荧光参数的手持式荧光仪。它配备了浸入式光学探头,可直接插到要测量的水体、悬浊液或培养溶液中进行测量。aquapen 具备*的敏感度,可检测0.5μg chl/l的叶绿素荧光,可以检测浮游植物浓度极低的自然水体,可用于野外和实验室测量。
ayp-c100手持式叶绿素荧光测量仪采用调试式荧光测量技术,可设置多种参数,方便测量多种植物叶绿素荧光。外观小巧,方便携带,设计新颖,操作简单,经济耐用,精度高稳定性好。
应用领域
适用于光合作用研究和教学,植物及分子生物学研究,农业、林业,生物技术领域等。研究内容涉及光合活性、胁迫响应、农药药效测试、突变等。
·植物光合特性和代谢紊乱筛
·生物和非生物胁迫的检测
·植物抗胁迫能力或者易感性研究
·代谢混乱研究
·长势与产量评估
·植物——微生物交互作用研究
·植物——原生动物交互作用研究
典型样品
·地表结皮
·地衣、苔藓
·表层水体藻类
·其它
功能特点:
结构紧凑、便携性强,led光源、检测器、控制单元集成于仅手机大小的仪器内,重量仅180g功能强大,是叶绿素荧光技术的结晶产品,具备了大型荧光仪的所有功能,可以测量所有叶绿素荧光参数内置了所有通用叶绿素荧光分析实验程序,包括两套荧光淬灭分析程序、3套光响应曲线程序、ojip–test等高时间分辨率,可达10万次每秒,自动绘出ojip曲线并给出26个ojip–test参数探头可直接插入水体中测量,简便快捷可配备gps模块,输出待时间戳和地理位置的叶绿素荧光参数图表fluorpen专业软件功能强大,可下载、展示叶绿素荧光参数图表,还可实现遥控功能配置灵活,可选配蓝牙通讯或usb通讯可选配野外自动监测式fluorpen,防水防尘设计工作原理
利用调制式荧光测量技术,采用led光源,选择仪器内置的给光方案测量并计算叶绿素荧光的各种参数。
实验过程和测量参数
·ft:瞬时叶绿素荧光、暗适应完成后ft=fo
·qy:光量子效率,表示光系统ii 的效率,等于fv/fm(暗适应完成的样品)或fv’/fm’ (光适应完成的样品)
·ojip:叶绿素荧光瞬时ojip曲线是反应光合作用过程中植物生理时间过程的重要信号。
·npq:非光化学淬灭,表示光合作用中叶绿素吸收光能后以热形式散失掉的部分。
·光曲线:qy对不同光强的适应曲线。
·可选配gps模块
技术参数
测量参数包括f0、ft、fm、fm’、qy_ln、qy_dn、npq、qp、rfd、area、mo、sm、pi、abs/rc等50多个叶绿素荧光参数,及3种给光程序的光响应曲线、2种荧光淬灭曲线、ojip曲线等ojip–test时间分辨率为10µs(每秒10万次),给出ojip曲线和26个参数,包括f0、fj、fi、fm、fv、vj、vi、fm/f0、fv/f0、fv/fm、mo、area、fix area、sm、ss、n、phi_po、psi_o、phi_eo、phi–do、phi_pav、pi_abs、abs/rc、tro/rc、eto/rc、dio/rc等3种给光程序光响应曲线,20多个叶绿素荧光参数2种荧光淬灭曲线,20多个参数测量光:0–0.03µmol(photons)/m².s可调光化学光:0–1000µmol(photons)/m².s可调饱和光:0–3000µmol(photons)/m².s可调光源:标准配置蓝光455nm,可根据需求配备红光或白光叶绿素荧光检测限:0.5μg chl/l·波长检测范围:697nm-750nm
·bois:可升级
·通讯:usb或蓝牙
·存储:4m
·数据存储:100,000个
·显示:2 x 8字符黑白液晶屏
·键盘:密封防水设计2键
·自动关机:5分钟无操作
·电源:4 aaa碱性电池或充电电池
·电池寿命:持续测量70 h
·低电报警
·尺寸:120 x 57 x 30 mm; 4.7 x 2.2 x 1.2
·重量:180 g, 6.5 oz
·操作条件:温度:0 ~55 ºc;相对湿度:0 ~95 %非冷凝
·存储条件:温度:-10~+60 ºc;相对湿度:0 ~95 %非冷凝
·软件:fluorpen2.0,适用于windows 2000、xp、7,实时显示和遥控,植入gps绘图,excel输出
操作软件与实验结果
产地: 欧洲
参考文献
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kviderova j. (2010): environmental toxicology doi:10.1002.
harding s.a., jarvie m.m., lindroth r.l. and tsai ch-j. (2009):a comparative analysis of phenylpropanoid metabolism, n utilization, and carbon partitioning in fast- and slow-growing populus hybrid clones. j. exp. botany, vol. 60 (12), pp. 3443-3452.
klem k. and bajerova e. (2008):adjustment of herbicide dose in sugar beet based on non-invasive chlorophyll fluorescence measurements. ageng 2008 conference, hersonissos, crete.
附:ojip参数及计算公式
bckg = background
fo: = f50µs; fluorescence intensity at 50 µs
fj: = fluorescence intensity at j-step (at 2 ms)
fi: = fluorescence intensity at i-step (at 60 ms)
fm: = maximal fluorescence intensity
fv: = fm - fo (maximal variable fluorescence)
vj = (fj - fo) / (fm - fo)
fm / fo = fm / fo
fv / fo = fv / fo
fv / fm = fv / fm
mo = tro / rc - eto / rc
area = area between fluorescence curve and fm
sm = area / fm - fo (multiple turn-over)
ss = the smallest sm turn-over (single turn-over)
n = sm . mo . (i / vj) turn-over number qa
phi_po = (i - fo) / fm (or fv / fm)
phi_o = i - vj
phi_eo = (i - fo / fm) . phi_o
phi_do = 1 - phi_po - (fo / fm)
phi_pav = phi_po - (sm / tfm); tfm = time to reach fm (in ms)
abs / rc = mo . (i / vj) . (i / phi_po)
tro / rc = mo . (i / vj)
eto / rc = mo . (i / vj) . phi_o)
dio / rc = (abs / rc) - (tro / rc)
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